Mi área central de estudio es la síntesis proteica local en axón y la aplicación de la microscopía de fluorescencia al estudio de la biología celular y molecular neuronal. En los últimos 4 años me he centrado especialmente en la adaptación de la microscopía de super resolución en Uruguay mediante el armado y puesta a punto de un microscopio "custom build" y su acceso a grupos de investigación nivel nacional, la búsqueda de colaboradores del exterior expertos en la temática y la realización de pasantías en el exterior en dichas temáticas.
Etapa de Formación.
- Durante mi pasantía de grado dirigida por el Dr. José Sotelo Silveira, estudié la distribución de la proteína Programmed Cell Death 4 (Pdcd4) en sistema nervioso central y periférico. Analicé la distribución de Pdcd4 en procesos de regeneración axonal por primera vez mediante microscopia confocal detectando una disminución en su expresión en axones sometidos a injuria, lo que podría revelar un posible rol en su crecimiento y regeneración axonal.
- Durante mi maestría, también dirigida por el Dr. Sotelo Silveira, diseñé un sistema para estudiar las proteínas neo-sintetizadas en axones in vivo mediante aminoácidos análogos de metionina detectados por fluorescencia, estudiando la regulación de la SPL axonal in vivo por la vía mTOR.
- En mi doctorado, también orientado por el Dr. Sotelo Silveira, estudiamos el papel de Pdcd4 como regulador del crecimiento y regeneración axonal, analizando si esta proteína y el neurofilamento liviano son neo-sintetizados en el axón e identificando que proteínas son sintetizadas localmente en dicho compartimento por ensayos de proteómica. Para ello tuvimos el apoyo del Dr. Federico Dajas Bailador de la Universidad de Nottingham, Inglaterra y del Dr. Thomas Kislinger de la Universidad de Toronto y el Princess Margaret Research Center en Toronto, Canadá. Producto de mi doctorado se desarrollaron 3 publicaciones como primer autor en revistas arbitradas internacionales.
- En Agosto del 2020 me integré a la Unidad de Bioimagenología Avanzada (UBA), una unidad mixta entre el Hospital de Clínicas y el Instituto Pasteur liderada por el PhD. Leonel Malacrida con un cargo de asistente grado 2 por un proyecto CSIC I+D que consiste en el desarrollo de un sistema óptico basado en fibras ópticas para el análisis espectroscópico por fluorometría in vivo de los niveles de NADH en riñones de ratones con isquemia renal. Finalicé este cargo en Diciembre del 2022.
Primeros pasos hacia ser un investigador independiente.
- Mis actividades de investigación me acercaron a la microscopía de fluorescencia. Es así que paralelamente a mi actividad académica, desempeño un cargo técnico de microscopía confocal y epifluorescencia del IIBCE desde Julio del 2014, encargándome de 2 microscopios confocales (Olympus FV300 y ZEISS 800) y un epifluorescencia (Olympus IX-81). En este período he entrenado más de 250 usuarios. Además, obtuve financiación a partir del llamado de Actualización de Grandes Equipos De ANII en las convocatorias del 2017 y 2019 y también desarrollé una pasantía en el exterior en el centro de microscopía AOMF en Toronto, Canadá en 2019 con fondos del llamado de actualización de equipos ANII 2018.
- Desde el año 2018 hasta Febrero del 2025 fui el responsable de la plataforma de microscopía del IIBCE, donde apuntalé a la misma como un centro de referencia donde se brindaran servicio de microscopía a la comunidad académica y también se desarrollaran actividades de investigación, cursos de grado y posgrado y colaboraciones con investigadores del IIBCE y de otros centros nacionales y del exterior. Desde 2022 y hasta mi retiro del cargo instalamos el primer sistema de microscopía TIRF custom build del país con fondos concursados en ANII y PEDECIBA y fondos propios del IIBCE y también el primer microscopio de super resolución basado en los protocolos de dSTORM y DNA-PAINT del Uruguay. Para ello me asocié con investigadores del exterior expertos en la temática de microscopía de super resolución y obtuve fondos para realizar pasantías en sus laboratorios en 2023 y 2024. Además la plataforma de microscopía contó desde enero del 2022 a enero del 2025 con la Magister Carolina Oliveira como Investigadora de Apoyo para esta plataforma.
- En el contexto de extender el uso del microscopio de super resolución en la comunidad científica local, desde Abril a Octubre del 2023 me he desempeñado como Investigador Asistente Grado 2 en el marco de un proyecto CSIC grupos liderado por la Dra. Adriana Geisinger y el Dr. Ricardo Benanvente para el estudio de la espermatogénesis. En particular participé en el estudio de la arquitectura del complejo sinaptonémico mediante microscopía de super resolución utilizando protocolos de DNA-PAINT y el microscopio de super resolución que hemos instalado en IIBCE.
- Desde Julio del 2023 soy co-tutor de la tesis de doctorado en curso del Licenciado Joaquín Garat, como co-tutor de una propuesta de doctorado enviada recientemente a las becas DAAD del Magister Ignacio García (número de aplicación 57693451) y recientemente como co-tutor de la tesis de doctorado del Magister Ignacio García financiada por ANII. Los mencionados proyectos están en curso y cuentan con preguntas biológicas donde es clave la microscopía de alta y super resolución.
- En Febrero del 2025 asumí un cargo de investigador efectivo grado 3 del Departamento de Ciencias Biológicas del CENUR Litoral Norte en Paysandú dentro del grupo de Histología y Embriología. Respecto a la docencia, dicto y soy coordinador del curso del CIO Salud Bases Histo Anatomo Funcionales Humanas (BHAFH) además de coordinador regional del curso HNCR (UC9) de segundo de medicina y docente en las Unidades Curriculares UC8 y UC12. En investigación formé junto al grupo de la tecnicatura en Anatomía Patológica del CENUR un laboratorio del cual soy responsable (Plataforma Integrada de Histología, Anatomía Patológica y Microscopía de Superresolución o PHIAPOS) donde buscamos construir un centro de imagenología en la región instalando y modificando equipos de alta y super resolución así como el estudio de muestras de cáncer de mama. Estoy además participando en la formación de 8 estudiantes de grado y cuento con un grupo de 7 investigadores.
Desde el año 2014 a la fecha, en conjunto con la Comisión de la Plataforma de Microscopia Confocal y Epifluorescencia del IIBCE, he participado en sucesivas convocatorias para obtener fondos que nos permitan mejorar los microscopios institucionales que tenemos a nuestro cargo (los confocales ZEISS 800 y Olympus FV300 y el epifluorescencia Olympus IX-81). En este marco hemos obtenido fondos de los llamados de actualización de equipos ANII (2017 y 2019), llamados para capacitación y mantenimiento de equipamiento científico de ANII (2018), los llamado de equipos PEDECIBA (2019, 2020, 2021, 2022 y 2023) y el apoyo del sistema de donaciones especiales MEF-ANII 2022 y 2023. El total de fondos obtenidos asciende a los 6.500.000 pesos uruguayos. También he realizado un curso en el exterior (en un centro de microscopía en Toronto, Canadá) para aprender sobre diversas técnicas de microscopía de fluorescencia y análisis de imágenes (con fondos para capacitación y mantenimiento de equipos ANII 2018). Actualmente estoy realizando una pasantía en un laboratorio experto en la aplicación de microscopía de super resolución al estudio de organelos celulares en el SickKids Hospital de Toronto, Canadá y en 2024 aprenderé sobre (d)STORM con el grupo del Profesor Markus Sauer en Alemania, inventor de la técnica. Para dichas pasantias se obtuvieron una beca de movilidad de ANII y becas internacionales de PROLAB, Klip Scholarship y la Alexander von Humbolt Fellowship.
Con fondos ANII y PEDECIBA concursables y fondos del IIBCE instalamos nuevo equipamiento para el microscopio confocal ZEISS 800 que lo hace compatible con estudios in vivo (con fondos del llamado de Actualización de Equipos ANII 2017 y PEDECIBA 2019). Además actualizamos el microscopio de epifluorescencia con tecnología TIRF - el primero en Uruguay con esta tecnología y lo convertimos en el primer microscopio de super resolución de nuestro país. El mismo es de tipo estocástico y compatible con las tecnologías dSTORM y DNA-PAINT. Recientemente acoplamos a su óptica un sistema HILO para observar regiones en el Z específicas con menor ruido de fondo provenientes de otros planos focales compatible con la adquisición de imágenes de super resolución.
Para el armado del microscopio de super resolución, contamos con la colaboración y asesoramiento de expertos en el tema tales como el Dr. Jonas Ries de la Universidad de Heidelberg en Alemania, el Dr. Markus Sauer de la Universidad de Wurzburg en Alemania (inventor del (d)STORM), el Dr. Luciano Masullo del Molecular Imaging and Bionanotechnology Max Planck perteneciente al Grupo del Prof. Jungmann (inventor del DNA-PAINT), el Dr. Peter Kim del SickKids Hospital en Toronto, Canadá (un experto en el uso de microscopía de SR en organelos celulares) y el Dr. Ricardo Benavente, quien ha estudiado la arquitectura del complejo sinaptonémico con estas tecnologías.
Vale destacar que en 2023 hemos obtenido fondos de la beca Alexander Von Humboldt para desarrollar un proyecto en conjunto con el Dr. Profesor Markus Sauer y aprender sobre (d)STORM y obtuvimos una beca (SicKids Klip Scholarship) para concurrir al laboratorio del Dr. Kim en Toronto, Canadá y aprender sobre diversos protocolos de SR aplicados al estudio de los organelos axonales. Por último se nos otorgó el Fondo Carlos Vaz Ferreira con el cual estudiaremos la interacción entre la maquinaria traduccional y el citoesqueleto axonal mediante microscopía de super resolución y la puesta a punto del protocolo de Exchange DNA-PAINT. un sistema que permite evaluar múltiples marcadores (hasta 30) en una misma muestra biológica.
En línea con estas innovaciones, hemos realizado los pasos técnicos y administrativos necesarios para transformar la plataforma de microscopía del IIBCE en un centro de investigación en imagenología y de colaboración con otros investigadores nacionales e internacionales, además de ser un servicio de prestaciones técnicas para la adquisición y procesamiento de imágenes de alta y super resolución.
Actualmente he dejado mi cargo como responsable de la plataforma de microscopía del IIBCE y tomé un cargo de investigador grado 3 en el CENUR Litoral Norte de Paysandú, dentro del grupo de Histología y Embriología del Departamento de Ciencias Biológicas (CDB). En 2026 obtuve la Dedicación Total en el marco de este cargo y logramos la fusión con el grupo de la Tecnicatura en Anatomía Patológica del CENURLN para formar un laboratorio dentro del DCB del cual soy responsable: Plataforma Integrada de Histología, Anatomía Patológica y Óptica de Superresolución (PHIAPOS). Buscamos armar un centro de imagenología basado en microscopía de alta y superresolución de referencia para la región y estamos comenzando a investigar la histopatología celular y molecular en cáncer de mamá a partir de muestras de pacientes del Hospital de Paysandú.
Actividades |
31 |
Líneas de investigación |
7 |
Proyectos Investigación Desarrollo |
9 |
Docencia |
7 |
Extensión |
1 |
Capacitación Entrenamiento |
2 |
Servicio Técnico Especializado |
2 |
Pasantia |
2 |
Otra Actividad Técnica |
1 |
Producción bibliográfica | 18 |
Artículos publicados en revistas científicas | 15 |
| Completo | 15 |
Artículos aceptados para publicación en revistas científicas | 1 |
| Completo | 1 |
Trabajos en eventos |
1 |
Textos en periódicos |
1 |
| Revistas | 1 |
Producción técnica | 5 |
Productos tecnológicos |
1 |
Otros tipos |
4 |
Evaluaciones | 8 |
Evaluación de proyectos | 3 |
Evaluación de publicaciones | 2 |
Evaluación de convocatorias concursables | 3 |
Formación RRHH | 4 |
Tutorías/Orientaciones/Supervisiones concluidas |
1 |
| Otras tutorías/orientaciones | 1 |
Tutorías/Orientaciones/Supervisiones en marcha |
3 |
| Tesis de doctorado | 2 |
| Tesis de maestria | 1 |
|   |   |